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domingo, 7 de junio de 2026
jueves, 17 de abril de 2025
viernes, 21 de febrero de 2025
Materiales de punción
La
jeringa para, extracción de sangre es diferente a la que se usa para inyectar,
es de tres piezas con un embolo reforzado que realiza un vacío perfecto.
Para
un adulto el diámetro de aguja recomendado es de 0.9 mm a 1.1 mm, el largo 25
mm de bisel corto.
19 a 21G para volúmenes de hasta 10 mL
18G para volúmenes mayores
16G para grandes volúmenes (donantes de sangre)
Para niños se recomienda el uso de agujas con aletas 21G a 23 G.
Si
debemos realizar varias extracciones, como en las pruebas de estimulación o
tolerancia, conviene colocar una cánula desde la cual las efectuamos
sucesivamente con un mínimo de trauma para las venas del paciente.
Otro
sistema
consiste en la utilización de tubos al vacío los cuales están diseñados para
contener una cantidad predeterminada de sangre.
Estos
emplean una aguja de doble punta, una hacia la vena del paciente y otra para
perforar el tubo.
Al
producirse
la perforación, el vacío hace que la sangre entre a presión en el mismo y este
en contacto inmediatamente con el anticoagulante si lo hubiere, evitando la
formación de microcoágulos.
El
anticoagulante
puede contaminar el extremo de la aguja que entra al tubo, por lo cual el orden
de llenado de los tubos es diferente si trabajamos con este sistema que si lo
hacemos con el convencional de jeringa aguja.
Agujas BD Vacutainer
Descripción
Aguja
para
toma múltiple 22G x 38 mm
Negra
Aguja
para toma múltiple 21G x 38 mm Verde
Aguja
para toma múltiple 20G x 38 mm Amarilla
Aguja
para
toma múltiple 22G x 25 mm Negra
Aguja
para
toma múltiple 21G x 25 mm Verde
Aguja
para
toma múltiple 20G x 25 mm Amarilla
Ejemplo
de operativa del procedimiento para extracción de sangre por punción venosa
Material
necesario
•Aguja 19G (más gruesa) para extracción de
más de 10 mL y venosa mayor calibre.
•20-21G (más finas) para extracción de
volumen hasta 10mL y venas más finas.
•21-23 G para muestras pediátricas, usar
preferentemente cortas
•Con anticoagulante
Orden
de llenado de los tubos para un sistema al vacío:
a)Tubo
seco
b)Tubo
para
pruebas de coagulación
c)Tubos
con
aditivos: citrato, heparina, EDTA, oxalato
Orden
de llenado si se utiliza jeringa:
a)Tubo con
anticoagulante
b)Tubo para
prueba de coagulación
c) Tubo seco
Con
anticoagulante:
EDTA: hemograma
Citrato
de
sodio (relación 1:9) pruebas de coagulación.
Citrato
de
sodio (relación 1:4) velocidad de eritrosedimentación.
Suero y plasma
El
suero se obtiene a partir de la sangre por
centrifugación después de la
finalización del
proceso de
coagulación llevado a cabo por
las plaquetas
y los factores de la coagulación.
Por
definición, está desprovisto de factores
de coagulación
pero enriquecido
con los componentes celulares
y productos metabólicos
de
plaquetas.
El
plasma es el sobrenadante virtualmente libre
de células
obtenido tras la centrifugación
de la
sangre, cuya coagulación está inhibida
por
la adición de anticoagulantes
inmediatamente después
de la toma de la muestra.
Los
anticoagulantes
inhiben la formación
del coágulo
mediante diversos mecanismos.
Tipos de muestra sanguinea
La muestra de sangre requerida para el examen solicitado puede ser: capilar, arterial o venosa de acuerdo al metabolito a analizar o a las circunstancias del paciente.
Sangre Capilar
Se utiliza en lactantes, en los adultos, en grandes quemados, en obesos, en pacientes que no tengan venas accesibles, en los que se encuentran bajo tratamiento que requiera preservar la vía venosa para inyectables, en los niños con venas muy finas y frágiles y cuando el volumen requerido no justifique la punción venosa.
Concepto de muestra capilar
Es la recolección de una muestra de sangre que se obtiene punzando la piel.
Los capilares son diminutos vasos sanguíneos que se encuentran cerca de la superficie de la piel.
Procedimiento se realiza de la siguiente manera:
1)Estimular la zona de punción
2)Se punza la piel del dedo, el talón u otra zona con una aguja afilada o una lanceta.
3)Se puede colocar algodón o un vendaje en el sitio de la punción si hay algún sangrado continuo.
4)La sangre se puede recolectar en una pipeta, en un portaobjetos, sobre una de tira de examen o en un recipiente pequeño.
Recomendaciones especificas
•Sostener el sitio de la punción, (talón, dedo, lóbulo de la oreja) en forma segura.
•Si no se puede recolectar la totalidad de la muestra, volver a vaso dilatar. No punzar en el mismo lugar, ni con la misma lanceta.
•Aplicar presión en el sitio de la punción, una vez finalizada la extracción, para evitar hematoma.
•Identificar la muestra.
•Registrar el procedimiento, condiciones del sitio, tolerancia del paciente.
Sangre arterial
Los sitios más comunes de punción arterial son la arteria femoral, la arteria braquial y la arteria radial.
La sangre arterial es necesaria para el estudio de la oximetría, del pH y de la pCO2 en pacientes delicados en los que se debe contemplar sus condiciones tal como estado de ventilación, flujo de O2 administrado, etc.
Si se le aplicaron recientemente cambios en la ventilación, o ajuste de dosis en el flujo de O2, se debe esperar un mínimo de 30 minutos a que el paciente se estabilice.
La arteria ideal debe ser bastante grande, superficial, ofrecer fácil acceso, debe ser compensada por circulación colateral (realizar anteriormente prueba de que esta es correcta).
En
algunos
países solo los médicos están autorizados a tomar muestras de sangre arterial.
La ventaja crucial de la utilización de sangre arterial para el estudio de pH y gases en sangre es su homogeneidad desde la aorta a la circulación periférica.
El
anticoagulante de elección es la heparina liofilizada. No usar heparina liquida
por su efecto de dilución que disminuye la pCO2.
Se
debe agitar la jeringa rotando y de arriba hacia abajo por lo menos durante un
minuto y despreciar las dos primeras gotas.
Una burbuja de aire de la muestra, no afecta significativamente si se elimina antes de agitar la muestra y se procesa antes de 20 minutos.
Las muestras que se procesan inmediatamente no deben refrigerarse.
Si se demora el análisis, se deben refrigerar en baño de agua con hielo (dejar constancia en el informe que la muestra se refrigero).
Las muestras con más de dos horas, aun conservadas en hielo, no deben ser procesadas.
Tener en cuenta que la sangre total es un tejido vivo, contiene células que consumen oxígeno y desprenden CO2, en el caso de leucocitosis elevadas (> 20, 000/mm3) producen cada 10 minutos aumento de 1 mm Hg en la pCO2, disminución de 0.01 unidades de pH y disminución de 0.1 mm en la pO2.
Sangre venosa
El
sitio de punción debe escogerse cuidadosamente, evitando brazos con circuitos, lacerados, con fistulas o grandes hematomas.
Si a la paciente se le ha practicado una mastectomía, debe evitarse el brazo de ese lado, si esta es bilateral, tomarlo del lado en que primero se realizó la cirugía.
Evitar la punción de venosa de los miembros inferiores.
Las venas ideales son las del pliegue del codo, cubital y mediana cefálica.
En el estudio de los factores de la coagulación, debe evitar su uso el torniquete prolongado produce aumentos espurios de macromoléculas, proteínas y péptidos, componentes celulares y enzimas.
Suero
El
suero sanguíneo o suero hemático es el componente de la sangre resultante tras
permitir la coagulación de ésta y eliminar el coágulo resultante.
Es
equivalente
al plasma sanguíneo, pero sin las proteínas involucradas en la coagulación
(fibrinógeno en su mayor parte).
La
heparina interfiere en reacciones Ag-Ac, en
las
técnicas ELISA en la segunda reacción, en la determinación de sodio si
utilizamos heparina sódica y no debe emplearse en la investigación de crioproteínas
ya que precipitan al criofibrinógeno.
Sangre
entera
Se utiliza para hemogramas, hemoglobinas glicosiladas, electroforesis de hemoglobinas, gasometría
arterial o venosa, y es la nueva tendencia
para métodos rápidos en pruebas deslocalizadas.
Gestión de la Calidad en el Laboratorio. Fernández Espina
Gestión de la Calidad en el Laboratorio. Fernández Espina
lunes, 22 de mayo de 2017
sábado, 13 de mayo de 2017
Muestra de orina
Instrucciones para el paciente
Para paciente masculino:
Para paciente femenino:
• Lave sus manos con agua y jabón antes de obtener la muestra
• Separe sus labios
• Limpie sus genitales externos, de adelante hacia atrás, con tres toallas húmedas
• Seque con una toalla seca
• Deje salir un primer chorro a la taza del baño
• Deposite la siguiente porción en el frasco
• Elimine el resto en la taza del baño
• Tape el frasco evitando tocar el interior y entregarlo en el laboratorio lo antes posible
Para paciente masculino:
• Lave sus manos con agua y jabón antes de obtener la muestra
• Retraiga la piel del pene y lave la salida de la uretra con una toalla mojada (con pura agua)
• Limpie y seque con una toalla seca
• Deje salir un primer chorro a la taza del baño
• Deposite la siguiente porción en el frasco
• Elimine el resto en la taza del baño
• Tape el frasco evitando tocar el interior y entregarlo en el laboratorio lo antes posible
Para paciente femenino:
• Lave sus manos con agua y jabón antes de obtener la muestra
• Separe sus labios
• Limpie sus genitales externos, de adelante hacia atrás, con tres toallas húmedas
• Seque con una toalla seca
• Deje salir un primer chorro a la taza del baño
• Deposite la siguiente porción en el frasco
• Elimine el resto en la taza del baño
• Tape el frasco evitando tocar el interior y entregarlo en el laboratorio lo antes posible
Guía práctica
para la estandarización del procesamiento y examen de las muestras de orina.Por: M. en C. Vicente de Mária
y Campos Otegui. BIO-RAD.
sábado, 15 de abril de 2017
LCR (toma de muestra)
El liquido cefalorraquídeo puede obtenerse por punción lumbar, punción de cisternas, punción cervical lateral o mediante cánulas ventriculares o derivaciones. un manómetro se adapta antes de extraer cualquier liquido para registrar la presión de apertura.(1)
Con presiones normales, pueden extraerse hasta 20 mL de LCR sin ningún peligro.
Si la presión inicial es >200 mm Hg, no deben extraerse más de 2 mL.
La muestra se dividirá en tres tubos estériles:
Tubo 1: Estudios químicos e inmunológicos
Tubo 2: Exámen microbiológico
Tubo 3: Recuento celular y diferencial.
Las muestras necesitan enviarse al laboratorio y ser procesadas rápidamente para minimizar la degradación celular, que empieza una hora después de la recolección.
Se recomienda meterla en refrigeración salvo en las muestras de cultivo ya que los organismos exigentes como el Haemophilus influenza y la Neisseria meningitidis no sobrevivirán.
(1).El Laboratorio en el Diagnostico Clinico- Todd-Sanford
martes, 21 de febrero de 2017
Muestra de Esputo
Es preferible realizar la toma antes de
instaurar tratamiento antibiótico.
No es útil para anaerobios.
En niños pequeños o pacientes que no expectoran o tragan sus esputos, puede realizarse una aspiración gástrica tras un periodo de ayuno de 8 horas.
El esputo que se recolecte debe enviarse rápidamente al laboratorio antes de dos horas.
Si no es posible,conservar en refrigerador.
Toma de muestra:
a) Obtener esputo tras expectoración profunda, preferentemente matinal, y después de haberse enjuagado la boca con agua. No cepillar los dientes
b)Se recogerá en envase estéril de boca ancha
c) Se realizaran tres tomas, recolectadas en días consecutivos (cada una), y se enviaran inmediatamente al laboratorio para su procesamiento si el paciente esta ingresado, si es ambulante guardara las dos primeras tomas en refrigerador a 4°C, no congelador, y al tercer día las traerá todas juntas
A la recepción de la muestra se debe:
•Verificar la existencia de muestra en el frasco
•Que no sea saliva, pues disminuye la calidad y rentabilidad de la muestra
Gestión de la Calidad en el Laboratorio. Fernández Espina
Exudado Ótico
Sin haber ingerido antibióticos 3 días antes de la toma.
Se deberán limpiar posibles restos de pus o secreciones del conducto auditivo externo con hisopo humedecido en solución salina estéril y descartar.
 |
| Sin ingerir |
Posteriormente, tomar la muestra del oído o indicado o de ambos por separado, frotado con un nuevo hisopo contra las paredes.
LANS. LABORATORIOS DE ANALISIS
CLINICOS de referencia
Cultivo de líquidos biológicos (bronquial, ascitis o peritoneal, sinovial, diálisis
La toma de estos productos es un procedimiento medico.
El volumen mínimo a recolectar es de 1 mL.
Enviar en recipientes estériles de tapón de rosca o de presión negativa sin conservadores.
No se recomiendan hisopos embebidos en el liquido.
El volumen mínimo a recolectar es de 1 mL.
Enviar en recipientes estériles de tapón de rosca o de presión negativa sin conservadores.
No se recomiendan hisopos embebidos en el liquido.
Las muestras deben ser enviadas inmediatamente al laboratorio a temperatura ambiente.
LANS. LABORATORIOS DE ANALISIS CLINICOS de referencia
LANS. LABORATORIOS DE ANALISIS CLINICOS de referencia
Cultivo de Exudado Nasofaríngeo
Se pide al paciente que se siente y coloque su cabeza hacia atrás.
Se introduce un hisopo de alginato de calcio, dacrón o nylon (nunca de algodón en caso de sospechar de Bordetella) por las fosas nasales hasta la nasofaringe, sin tocar los cornetes y tratando de producir un acceso de tos.
El hisopo se mantiene in situ de 10-15 segundos durante el acceso de tos, después de lo cual se retira rápidamente.
LANS. LABORATORIOS DE ANALISIS
CLINICOS de referencia
Cultivo de Exudado Nasal (narina derecha e izquierda)
Sin haber ingerido antibióticos 3 días antes de la toma.
Se recomienda tomar muestra profunda de ambas fosas nasales con el mismo hisopo, previamente embebido en solución salina estéril.
Se recomienda tomar muestra profunda de ambas fosas nasales con el mismo hisopo, previamente embebido en solución salina estéril.
Enviar en medio de transporte Stuart o Amies
Cultivo de Exudado Faríngeo
Sin haber ingerido antibióticos 3 días antes de la toma.
Realizar exudado de las amígdalas especialmente las áreas hiperémicas, purulentas o necróticas.
En lo posible no tocar mucosa oral, legua ni dientes.
Enviar en medio de transporte seleccionado (Stuart o Amies)
Realizar exudado de las amígdalas especialmente las áreas hiperémicas, purulentas o necróticas.
En lo posible no tocar mucosa oral, legua ni dientes.
Cultivo de Esperma (Espermocultivo)
Sin haber ingerido antibióticos 3 días antes de la toma.
Previo aseo de genitales externos y manos, obtener la muestra por masturbación en un frasco estéril.
Previo aseo de genitales externos y manos, obtener la muestra por masturbación en un frasco estéril.
Cultivo de Exudado Ocular
Sin haber ingerido antibióticos 3 días antes de la toma.
Realizar exudado y colocar en el medio de transporte seleccionado
Realizar exudado y colocar en el medio de transporte seleccionado
Cultivo de Exudado Uretral
Sin haber ingerido antibióticos 3 días antes de la toma.
Realizar la toma con hisopos uretrales de dacrón o alginato. Las muestras deben llegar al laboratorio en un lapso no mayor de 12 horas.
Cultivo de Orina (Urocultivo)
Sin haber ingerido antibióticos 3 días antes de la toma. Recolectar la primer orina de la mañana, micción media, previo aseo de genitales externos.
La muestra también puede ser obtenida por punción suprapúbica o en pacientes con sonda vesical.
Recolectar y enviar en contenedor estéril de cierre hermético con conservador microbiológico (como por ejemplo, el ácido bórico) enviar refrigerada.
Tipos de obtención de muestra para urocultivo:
1.Micción espontanea
2.Sonda vesical
3.Punción suprapúbica
4.Punción percutánea renal
Toma de la muestra por micción espontanea:
•Limpieza cuidadosa de genitales externos con agua y jabón neutro, separando los labios mayores en la mujer y retrayendo el prepucio en el varón, secar con gasa estéril, no utilizar antisépticos para limpieza
•Es preferible recolectar la primera orina de la mañana
•Despreciar la primera parte de la micción y recoge la segunda parte en envase estéril, terminando de orinar en el inodoro
•Mandar inmediatamente al laboratorio o guardar en refrigerador a 4°C
Toma de la muestra por sonda vesical transuretral:
•Es menos frecuente y presenta el problema de que se pueden producir infecciones al arrastrar gérmenes de la uretra hasta la vejiga.
•Son necesarias precauciones de asepsia: guantes asépticos, sondas de tamaño adecuado para cada enfermo y evitar traumatizar la uretra.
•Cunado un enfermo lleva una sonda permanente, la orina debe recolectarse puncionando directamente el catéter después de desinfectarle previamente con alcohol u otra solución antiséptica y no de la bolsa de drenaje.
Gestión de la calidad en el laboratorio clínico. Fernández Espina
La muestra también puede ser obtenida por punción suprapúbica o en pacientes con sonda vesical.
Recolectar y enviar en contenedor estéril de cierre hermético con conservador microbiológico (como por ejemplo, el ácido bórico) enviar refrigerada.
Tipos de obtención de muestra para urocultivo:
1.Micción espontanea
2.Sonda vesical
3.Punción suprapúbica
4.Punción percutánea renal
Toma de la muestra por micción espontanea:
•Limpieza cuidadosa de genitales externos con agua y jabón neutro, separando los labios mayores en la mujer y retrayendo el prepucio en el varón, secar con gasa estéril, no utilizar antisépticos para limpieza
•Es preferible recolectar la primera orina de la mañana
•Despreciar la primera parte de la micción y recoge la segunda parte en envase estéril, terminando de orinar en el inodoro
•Mandar inmediatamente al laboratorio o guardar en refrigerador a 4°C
Toma de la muestra por sonda vesical transuretral:
•Es menos frecuente y presenta el problema de que se pueden producir infecciones al arrastrar gérmenes de la uretra hasta la vejiga.
•Son necesarias precauciones de asepsia: guantes asépticos, sondas de tamaño adecuado para cada enfermo y evitar traumatizar la uretra.
•Cunado un enfermo lleva una sonda permanente, la orina debe recolectarse puncionando directamente el catéter después de desinfectarle previamente con alcohol u otra solución antiséptica y no de la bolsa de drenaje.
Gestión de la calidad en el laboratorio clínico. Fernández Espina
Cultivo de Mycoplasma hominis/ Ureaplasma urealyticum
Las muestras pueden ser: exudado uretral, exudado cérvico-vaginal, semen u orina.
Muestras Endocérvicales: Utilizar únicamente hisopos de dacrón o rayón o un cepillo citológico para la toma de la muestra.
El cérvix debe limpiarse cuidadosamente con el hisopo para remover secreciones antes de recolectar la muestra con un hisopo nuevo.
La mucosa debe rasparse para obtener una buena muestra.
Muestra Uretral: Limpiar el meato y pasar el hisopo o raspar el área para obtener células.
Esperma u Orina: Colectar esperma o primer chorro de orina en un frasco estéril.
En el caso de la orina y semen, inocular el medio de transporte con 300 µL de muestra y en caso de los exudados, colocar el hisopo en el medio de transporte especial. Enviar en refrigeración en un plazo no mayor a 16 horas
Muestras Endocérvicales: Utilizar únicamente hisopos de dacrón o rayón o un cepillo citológico para la toma de la muestra.
El cérvix debe limpiarse cuidadosamente con el hisopo para remover secreciones antes de recolectar la muestra con un hisopo nuevo.
La mucosa debe rasparse para obtener una buena muestra.
Muestra Uretral: Limpiar el meato y pasar el hisopo o raspar el área para obtener células.
Esperma u Orina: Colectar esperma o primer chorro de orina en un frasco estéril.
En el caso de la orina y semen, inocular el medio de transporte con 300 µL de muestra y en caso de los exudados, colocar el hisopo en el medio de transporte especial. Enviar en refrigeración en un plazo no mayor a 16 horas
Cultivo de liquido cefalorraquideo
El cultivo debe enviarse inmediatamente al laboratorio, pues algunos de los agentes etiológicos como Streptococcus pneumoniae, pueden lisarse rápidamente a partir de 1 hora tras su recolección.
Si no es posible, puede mantener la muestra en una estufa entre 35 y 37°C.
No se debe refrigerar pues se puede afectar la viabilidad de Neisseria meningitidis y Haemophilus influenzae.
Cultivo de Heridas y Abscesos abiertos
Sin ingerir antibióticos por lo menos 3 días antes de la toma.
Recoger el pus mediante jeringa y aguja, aspirando preferentemente las zonas profundas. Enviar al laboratorio de inmediato en tubos estériles con tapa de rosca.
Las muestras en hisopo no son recomendables y deben usarse solo en circunstancias muy excepcionales, cuando no se pueda recoger la muestra por otros métodos. Es importante especificar el sitio anatómico de donde se realizo la toma de la muestra.
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