domingo, 30 de abril de 2017

Hemoglobina Glicosilada

El seguimiento analítico de los niveles de glucosa en sangre de los diabéticos se apoya en dos parámetros:

Hemoglobinas glicosiladas para obtener los niveles medios de glucemia en los dos últimos meses.

Fructosamina para obtener el nivel medio de glucemia en las tres ultimas semanas previas a la extracción.

La glucosa sanguínea se va uniendo a la hemoglobina de forma no enzimática e irreversible durante los 120 días de vida de los hematíes.
Por tanto, la concentración de la hemoglobina glicosilada (HbAlc) es proporcional a la concentración plasmática media de glucosa durante ese período de tiempo (6-12 semanas previas).

Los valores normales oscilan entre el 4 y el 6,5%.

Contribuye a monitorizar de forma global la glucemia en el paciente diabético y sirve de guía al tratamiento, ya que es un excelente predictor de progresión de las complicaciones.

De esta forma, cuando la HbAlc media anual supera en 1,7 veces el límite superior ( >2%), se producen complicaciones en la mayoría de casos.

Así mismo, se considera que, cuando su valor es superior al 7% en dos determinaciones consecutivas, debe plantearse un cambio en la estrategia de tratamiento de la diabetes, siempre y cuando el beneficio a largo plazo de la disminución de complicaciones micro y macrovasculares supere el riesgo de hipoglucemia a corto plazo.

*La Clínica y el Laboratorio - Bacells, 22a edición
Imagen.http://www.farestaie.com/novedades/pacientes/60-hemoglobina-glicosilada-hba1c/

Glucosa

Significación clínica.

El diagnóstico precoz y el control de los pacientes diabéticos, tienen por objeto evitar la cetoacidosis y las complicaciones resultantes de la hiperglicemia, mediante el tratamiento adecuado.

Valores de referencia

Suero o plasma

Adultos: 74 - 106 mg/dl (4,11 - 5,89 mmol/l)
Niños: 60 - 100 mg/dl (3,33 - 5,55 mmol/l)
Neonatos: 1 día: 40 - 60 mg/dl (2,22 - 3,33 mmol/l)
mayor a 1 día: 50 - 80 mg/dl (2,78 - 4,44 mmol/l)

Orina aislada fresca

1 - 15 mg/dl (0,06 - 0,83 mmol/l)

Orina de 24 horas

< 0,5 g/24 hs (< 2,78 mmol/24 hs)

LCR

Niños: 60 - 80 mg/dl (3,33 - 4,44 mmol/l)
Adultos: 40 - 70 mg/dl (2,22 - 3,89 mmol/l)

Se recomienda que cada laboratorio establezca sus propios valores de referencia, teniendo en cuenta sexo, edad hábitos alimenticios y otros factores.(1)

Intolerancia a la glucosa.

Se caracteriza por valores repetidos de glucemia basal de entre 100 y 125 mg/dl o glucemias entre 140-199 mg/dl a las 2 h de una prueba de sobrecarga oral de glucosa. 

Suele corresponder a una situación previa a la diabetes mellitus.

Diabetes mellitus

Definida según los criterios de la Organización Mundial de la Salud (OMS) de 1998 por valores repetidos de glucemia en ayunas mayores o iguales a 126 mg/dl.

Sintomatología de diabetes más una glucemia aleatoria igual o superior a 200 mg/dl o glucemia a los 120 min de la prueba de tolerancia oral a la glucosa > 200 mg/dl. 

Estas determinaciones deben confirmarse una segunda vez, salvo en situaciones de descompensación metabólica aguda.

Diabetes gestacional.

Habitualmente cede después del parto, pero es un factor predictor de diabetes futura (el 60% de los casos desarrollan diabetes en los 15 años siguientes). 

Los criterios para el diagnóstico son la superación en dos de los siguientes cuatro puntos en la prueba de sobrecarga oral con 100 g de glucosa: 

Basal, 105 mg/dl; 
60 min, 190 mg/dl; 
120 min, 165 mg/dl; 
180 min, 145 mg/dl.

Diagnostico analítico

Las pruebas de sobrecarga oral de glucosa o tolerancia pueden ser: 

1.Test de O´Sullivan con 50 g de glucosa oral y determinaciones a los 0 y 60 minutos. 
2.La OMS recomienda ingerir 75 g de glucosa y analizar a los 0 y 120 minutos. 
3.Para gestantes se emplean 100 g de glucosa y lectura a los 0, 60, 120 y 180 minutos. 
4.La prueba standard consiste en administrar 75 g de glucosa y valorar la glucemia a los 0, 30, 60, y 120 minutos. 
5.El test de glucosa postprandial se basa en realizar un desayuno estandarizado y proceder a las extracciones para cuantificar la glucemia basal a los 0 minutos y la glucemia postprandial a los 60 minutos.

Glucosa postprandial.

La glucosa post-prandial (GPP) es el valor de glucosa en sangre después de ingerir alimento.

La concentración de glucosa se eleva en circulación aproximadamente 10 minutos después del inicio de la ingesta como resultado de la absorción de los hidratos de carbono de la dieta.

La concentración de GPP está determinada por la absorción, la secreción de insulina y de glucagon y sus efectos sobre el metabolismo hepático y en tejidos periféricos.

La magnitud y el momento del pico de la concentración dependen de muchos factores tales como la cantidad y la composición del alimento ingerido.

En individuos sanos el pico de glucemia es aproximadamente a los 60 minutos después del inicio de la alimentación, raramente excede los 140 mg/dl y vuelve al valor pre-prandial a las 2 o 3 horas.


(1).Inserto Wienner Lab
(2).a Clínica y el Laboratorio - Bacells, 22a edición.
http://vademecum.labdl.com.ar/ShowTest.aspx?ID=GLUPP

Cobas c111

Para laboratorios con volumen de trabajo reducido o pequeños, para la realización de pruebas de Química Clínica e Inmunoensayos homogéneos. 

Evaluación fotométrica con hasta 60 resultados/hora y análisis de electrolitos opcional con hasta 180 resultados/hora

Menú innovador que incluye HbA1c en sangre entera, Dímero-D y PCR de alta sensibilidad

Capacidad para realizar hasta 17 pruebas simultáneamente con paneles de indicación

Tipos de muestra: Suero, plasma, orina, sangre entera (HbA1c)

Fotómetro: 12 longitudes de onda, lámpara halógena de 20 W, medición monocromática y bicromática

Análisis que procesa:

Técnicas en Química Clinica

Fotometría

Es la rama de la óptica que estudia la iluminación de las superficies, iluminadas por fuentes luminosas y la intensidad de las mismas.
Turbidimetría

Es la medición de la luz transmitida a través de una suspensión, tiene la ventaja de permitir la valorización cuantitativa, sin separar el producto de la solución.

Las mediciones, pueden efectuarse con cualquier espectrofotómetro.

Se utiliza para el análisis de fibrinógeno, triglicéridos, complejos Ag-Ac y otras sustancias.

Aplicable cuando la dispersión es suficientemente grande (concentración alta de partículas).



Nefelometría


Mide la luz dispersada en dirección distinta a la luz emitida (generalmente con ángulos que oscilan entre 15 y 90º). 

Utiliza como instrumento el nefelómetro (en el que el detector se ubica con un ángulo que oscila entre 15 y 90º ej. a 90º). 


Se suele utilizar para concentraciones más diluidas. 


Permite mayor sensibilidad con concentraciones menores de partículas suspendidas. 


Constituye un método más exacto para la medida de la opacidad.



Preferible para concentraciones bajas de partículas, ya que la dispersión es menor y la disminución de intensidad del haz incidente es pequeña.



Se suele utilizar para medir concentraciones específicas de colonias de bacterias en algún medio de cultivo, o de muchas proteínas utilizando el principio de dispersión luminosa molecular.

Dentro de los fenómenos llamados luminiscencia se encuentran el de fluorescencia, fosforescencia y quimioluminiscencia.



Fluorescencia



Es la luminiscencia causada única y exclusivamente por rayos ultravioleta. 

El término fluorescencia proviene del mineral que presenta este fenómeno por naturaleza, la fluorita.

La fluorescencia se produce cuando una molécula absorbe luz de una determinada longitud de onda (energía), y emite luz de una longitud de onda superior (menor energía).

Cuando una molécula es excitada por un haz de luz de una intensidad y energía determinadas, absorbe energía y se produce el paso de sus electrones de un estado basal a un estado excitado, liberando esta energía en forma de luz, resultando en una emisión fluorescente o fluorescencia. 

Fluorimetría

Técnica espectrofotométrica que se basa en la absorción de radiación por parte del analito a medir en una muestra y su posterior emisión.

En bioquímica clínica:

Muestras biológicas de iones, enzimas, coenzimas, vitaminas, algunos medicamentos, etc.

Su gran aplicación es el fluoroinmunoanálisis que utiliza Ac marcados con una sustancia fluorescente, específicos de la sustancia a estudiar.

Fosforescencia

La fosforescencia es un fenómeno en el cual ciertas sustancias tienen la propiedad de absorber energía y almacenarla, para después emitirla gradualmente en forma de luz .

El principio físico en el que se basa la fosforescencia es el mismo que el de la fluorescencia, la principal diferencia radica en la forma de emitir la luz absorbida. 

En la fluorescencia es casi simultánea, y en la fosforescencia es retardada.

Quimioluminiscencia

Fenómeno que en algunas reacciones químicas, la energía liberada no sólo se emite en forma de calor o de energía química sino en forma de luz.

Normalmente, en estas reacciones de quimioluminiscencia se liberan moléculas con estado excitado que al bajar a su estado emiten la diferencia de energía en forma de luz.

A medida que progresa la reacción, los cambios de la composición química y la luz, disminuyen hasta desvanecerse por completo como resultado de la conversión. 

Generalmente la quimioluminiscencia es muy breve.

Espectrofotometría de absorción atómica

Es una técnica para determinar la concentración de un elemento metálico determinado en una muestra.

Refractometría

Es una técnica analítica que consiste en la medida del índice de refracción de un líquido con objeto de investigar su composición si se trata de una disolución o de su pureza si es un compuesto único. 
La medida continua en una columna cromatográfica puede indicar la composición o pureza del eluyente.

En el laboratorio de análisis clínicos se emplea el refractómetro para la medición de la concentración de solutos tales como la albúmina en muestras séricas y/o plasmáticas, y la medida del peso específico en orina.
Reactivos para química seca

Los reactivos de química seca constituyen la manera de introducir la muestra en los fotómetros de reflexión. 

Son unidades de reacción con una fase sólida: poseen en forma deshidratada, todos los componentes que se necesitan para la identificación de un analito determinado.

Modo de empleo: la muestra que contiene el analito a determinar (suero, plasma, sangre total, orina) se aplica sobre la superficie del reactivo en fase sólida, y a partir de esta difunde a la matriz, disolviendo los componentes de reacción que contiene; cuando los reactivos se disuelven se produce la reacción, que se cuantificara por fotometría de reflectancia.

Todos los sistemas constan de tres partes:

Parte soporte

Está constituida por una lámina de plástico, sobre la cual se construye el reactivo de fase sólida.

Parte reflectante

Su función es reflejar la luz; está hecha de materiales reflectantes como metales, o materiales fibrosos como el papel.

Parte reactiva

Contiene, en forma deshidratada todos los reactivos y sustancias auxiliares necesarias para que se produzca una reacción. 

Los reactivos son reconstituidos mediante rehidratación por el agua de la muestra

A veces se añaden otras capas con funciones complementarias como una capa difusora (con lo cual la muestra difunde rápidamente hacia los laterales y se distribuye uniformemente) o una capa separadora de plasma (la utilizan los sistemas preparados para trabajar con sangre total, su función es retener las células y permitir el paso del plasma hacia la matriz del reactivo).

La estructura de las capas depende del sistema reactivo de fase solida que se trate, variando de unos a Otros.

Tiras reactivas

Se utilizan para:

-análisis de orina

-autocontrol de la glucemia

-en sistemas de diagnóstico rápido en la consulta médica y a la cabecera del enfermo.

Consisten, básicamente en un soporte de plástico que sirve de soporte a una matriz de celulosa que contiene los reactivos secos necesarios para que se produzca una reacción con el componente a estudiar.

Tira reactiva del sistema Seralyzer (Ames): consiste en una matriz de celulosa impregnada de reactivos secos que se unen a una lamina soporte de plástico; sobre ella lleva una franja código, que tiene como finalidad ser leída cuando se la inserta en el instrumento.

Tira reactiva del sistema Reflotron (Boheringer Mannheim): consta de una lámina soporte al cual se le adhiere el sistema reactivo separado en dos zonas:

-una está unida a la lamina. Incluye una serie de capas destinadas a la preparación de la muestra.

-la otra se encuentra inicialmente separada de la lámina soporte, y se pone en contacto con ella por simple presión cuando se desea que el plasma entre en contacto con los reactivos para desencadenar la reacción; esta zona lleva en su superficie una laminilla transparente a través de la cual se realizara la lectura.

La disposición en dos bloques hace posible que la parte destinada a la preparación de la muestra se puedan llevar a cabo etapas de preincubación o eliminación de interferentes.

Esta tira incorpora también una capa separadora de fibra de vidrio para la obtención de plasma, con lo cual evitamos la centrifugación previa al análisis.

Ventajas de las tiras: al mantener los reactivos deshidratados aportan una prolongada estabilidad al sistema, que puede ser de meses e incluso de uno o dos años.

Películas multicapa o slides

Están constituidas por diferentes capas muy finas, a través de las cuales se van produciendo todas las etapas necesarias para la determinación cuantitativa del analito. Tiene la apariencia de una diapositiva y está constituido por cuatro capas (que incluyen todos los componentes del sistema). El sistema de más amplia implantación es el Ektachem (Kodak).

Capa difusora: sobre ella se deposita la muestra. Lleva sustancias capaces de reflejar la luz, es la superficie reflectante. Homogeneíza la muestra antes de que llegue a la capa reactiva, distribuyéndola por toda la superficie. Retiene células, cristales y pequeñas y grandes moléculas, así la muestra se convierte en un filtrado libre de proteínas, eliminándose las interferencias.

Capa reactiva: pueden ser una o varias, son las que contienen los reactivos.

Capa soporte: está hecha de plástico transparente y sobre ella se depositan todas las demás capas una tras otra. Tiene doble función: servir de soporte y dejar pasar la luz, ya que la lectura se hace por la parte inferior (la opuesta a la de la aplicación de la muestra).
Cromatografía 

La cromatografía es un método físico de separación en el que los componentes que se han de separar se distribuyen entre dos fases, una de las cuales está en reposo (fase estacionaria, F.E.) mientras que la otra (fase móvil, F.M.) se mueve en una dirección definida. 



Agrupa un importante y diverso conjunto de métodos que permiten separar componentes que estén estrechamente relacionados en muestras complejas.

Electroforesis

La mayoría de las biomoléculas poseen una carga eléctrica, cuya magnitud depende del pH del medio en el que se encuentran. 

Como consecuencia, se desplazan cuando se ven sometidas a un campo eléctrico.

Se denomina electroforesis a la técnica mediante la cual se separan las biomoléculas en disolución cuando se ven sometidas a un campo eléctrico. 

Se trata de una técnica fundamentalmente analítica, aunque también se puede realizar con fines preparativos.

Cada molécula se desplaza por efecto del campo, alcanzando rápidamente una velocidad constante al equilibrarse la fuerza impulsora (fuerza del campo eléctrico) con la resistencia al avance (fuerza de fricción o rozamiento) impuesta por el medio en el que se desplaza. 
Otras aplicaciones - de forma semejante a la electroforesis de proteína, también se realizan con frecuencia en el laboratorio, la de otras sustancias de gran interés clínico => lipoproteínas, hemoglobina y otras susceptibles de ionización en función del pH.



Técnicas de biología molecular 



Se aplican en el laboratorio clínico (microbiologia, bioquimica, hematología etc.) para el diagnostico de patologías de origen genetico de las que es conocido el gen causante; se basan en la capacidad de los acidos nucleicos de auto-reconorse => detectar y unirse unica y exclusivamente a su secuencia complementaria; capacidad de auto-duplicarse; se usan en técnicas de transferencia de Southern Blot y de Northern Blot y las técnicas de ampliación de ácidos nucleicos mediante RCP/PCR para el diagnostico de enfermedad infecciosas, análisis de paternidad y un patrón de huellas de ADN;



http://biomodel.uah.es/tecnicas/elfo/inicio.htm


sábado, 15 de abril de 2017

LCR (Análisis)


Características físico-químicas y composición del líquido cefalorraquídeo

Aspecto

El aspecto normal es limpio e incoloro (como “agua de cristal de roca”), no precipita, ni coagula. 

Las alteraciones del aspecto del LCR son:

Turbio (opalescente)

Es el aspecto que toma el LCR cuando posee aumento de su contenido en células, con predominio de polimorfonucleares, como en la meningitis bacteriana.

Varía desde levemente turbio a francamente purulento, dependiendo del germen en cuestión.

Color

Rojo (hemorrágico). Con todos sus matices de acuerdo a la etiología e intensidad. Puede ser de origen:

Traumático. Por rotura de un vaso sanguíneo a su paso por el espacio subdural. 

Citologia de rutina.

En condiciones normales debe ser menor o igual a 5 células/ml de predominio linfocitario (linfocitos: 93-97%; polimorfonucleares: 1-3%; monocitos: 0,5-1%).(1)



En un líquido contaminado por la presencia de sangre, el recuento celular no tiene valor, pues la sangre vertida desfigura el contenido celular real.(2)




Pleocitosis es el término con que se denomina al aumento del contenido en células (superior a lo normal). 

Puede ser leve, moderada o intensa:

1. Pleocitosis moderada o intensa de predominio linfocitario: meningitis tuberculosa; meningitis viral; meningitis micótica; encefalitis; sífilis; poliomielitis anterior aguda. 

2. Pleocitosis moderada o intensa de predominio polimorfonuclear: meningitis bacteriana aguda.

3. Pleocitosis leve de predominio polimorfonuclear o linfocitario que se observa en los meningismos: meningitis serosas; por procesos vecinos como sinusitis, mastoiditis, otitis, sin constituir el cuadro meningítico clásico o completo. 

Examen químico de rutina

Proteínas
Su presencia en el LCR se denomina proteinorraquia, y el contenido normal es de 15-45 mg/100 ml. 

Es variable dependiendo del sitio de extracción de la muestra para la determinación y de la edad: 

1. Seis meses a 13 años: 7-28 mg/100 ml.
2. Entre 17-50 años: 20-45 mg/100 ml.
3. Mayor de 60 años: 40-65 mg/100 ml.
4. Ventricular: 10-25 mg/100 ml.

Las proteínas están constituidas por el 80% de albúmina y el 20% de globulinas.

La hiperproteinorraquia es el aumento de proteínas en el LCR y se observa en la meningitis; la poliomielitis; la encefalitis; la neurosífilis; el bloqueo de la circulación del LCR; el síndrome de Guillain-barré y la HSA. 

En el LCR se suele practicar la electroforesis e inmunoelectroforesis para la determinación de gamma globulinas,de otras fracciones proteicas y de bandas oligoclonales.(1)


Cociente albúmina-globulina



El valor normal es 8:1. Se eleva (hasta incluso 12:1) en procesos agudos, como la meningitis. En afecciones crónicas, como la tabes dorsal, tumores medulares o parálisis general progresiva, tiende a disminuir, incluso hasta 0,9:1.


Equilibrio ácido-base

En condiciones normales el pH del LCR es menor que el del plasma, alrededor de 7,3. Su cambio suele reflejar variaciones en el pH sanguíneo. Existe una acidosis primaria del LCR en meningitis purulentas, hemorragia subaracnoidea y tras cirugías cerebrales.



Cloruros en líquido cefalorraquídeo (clorurorraquia )


Su cifra normal es de 700 a 750 mg en 100 ml (120-130 mEq/1), considerando el NaCl. Las variaciones patológicas de interés clínico son sobre todo las hipoclorurorraquias.


Glucosa en líquido cefalorraquídeo (glucorraquia)


La glucosa del LCR proviene del suero, y por tanto su concentración depende del nivel en sangre, del paso al LCR y de la metabolización. Como consecuen­cia, siempre que se quiera analizar la glucosa en LCR se deberá disponer del valor de la glucemia del paciente en el momento de la punción lumbar. El valor normal mínimo es el 60% de la glucemia. Habitualmente se sitúa entre 50 y 80 mg/100 ml (en los niños es ligeramente más alta, hasta 70-90 mg/100 ml).

El valor es más elevado en el LCR extraído de ventrículos o cisterna que en el LCR obtenido por punción lumbar.


Ácido láctico y su relación con el ácido pirúvico


El ácido láctico -y la relación láctico/pirúvico- aumenta en el prematuro y en las meningitis bacterianas o fúngicas. No aumenta en las meningitis virales.

Su valor también está elevado con la presencia de metástasis leptomeníngeas.

El valor normal de láctico oscila entre 10 y 20 mg/100 ml.

Es un dato para corroborar la eficacia de los antimicrobianos. Aumenta siempre que existe hipoglucorraquia. Puede apreciarse un aumento en infartos cerebrales y encefalopatías hepáticas. Se ha comenzado a utilizar como apoyo diagnóstico en pacientes con sospecha de encefalopatías mitocondriales.(2)


Examen Microbiológico


La observación directa tras las tinciones adecuadas puede servir para detectar la presencia de gérmenes, lo cual siempre es patológico. En la meningitis tuberculosa puede haber baciloscopias negativas, lo cual no descarta el diagnóstico. La tinción más habitual es el Gram (que permite diferenciar entre bacterias grampositivas y gramnegativas). Además suelen utilizarse la tinción de tinta china (para criptococo) y la de Ziehl-Nielsen (para bacilo de Koch).

Cultivos



A pesar de no ser una prueba rápida, es fundamental preparar el cultivo de LCR en diversos medios para comprobar la naturaleza del germen infectante.

Se deben utilizar medios para crecimiento de bacterias aerobias y anaerobias. 

En caso de sospecha de hongos se utiliza el agar Sabouraud. Cryptococcus neoformans y las especies de Candida son los más frecuentemente aislados.
Para la tuberculosis se utiliza el cultivo de Lówenstein. También se dispone de medios de cultivo más específicos para otras bacterias (Brucella) y medios de cultivos para virus. Después de comprobar el crecimiento del microbio, es preciso realizar el antibiograma para seleccionar los antibióticos o antiparasi­tarios adecuados.


(1). M.D. Sevillano García, P. Cacabelos Pérez y J. Cacho Gutiérrez Servicio de Neurología. Hospital Universitario de Salamanca. Salamanca. España.
(2). La Clínica y el Laboratorio - Bacells, 22a edición

LCR (toma de muestra)


El liquido cefalorraquídeo puede obtenerse por punción lumbar, punción de cisternas, punción cervical lateral o mediante cánulas ventriculares o derivaciones. un manómetro se adapta antes de extraer cualquier liquido para registrar la presión de apertura.(1)

Con presiones normales, pueden extraerse hasta 20 mL de LCR sin ningún peligro. 


Si la presión inicial es >200 mm Hg, no deben extraerse más de 2 mL. 

La muestra se dividirá en tres tubos estériles:

Tubo 1: Estudios químicos e inmunológicos 
Tubo 2: Exámen microbiológico 
Tubo 3: Recuento celular y diferencial.

Las muestras necesitan enviarse al laboratorio y ser procesadas rápidamente para minimizar la degradación celular, que empieza una hora después de la recolección. 

Se recomienda meterla en refrigeración salvo en las muestras de cultivo ya que los organismos exigentes como el Haemophilus influenza y la Neisseria meningitidis no sobrevivirán. 


(1).El Laboratorio en el Diagnostico Clinico- Todd-Sanford

Eritrocitos

Reticulocitos


Los reticulocitos son células anucleadas predecesoras de los eritrocitos con la diferencia de que poseen gránulos de ribosomas y algunas mitocondrias que les son útiles para sintetizar el 35 % de la hemoglobina restante. 

Este tipo de células está en la circulación periférica aproximadamente un día para convertirse posteriormente en un hematíe maduro que cumplirá con todas las funciones biológicas de estas células. 

A diferencia de los hematíes o glóbulos rojos maduros, los reticulocitos aún poseen ARN.

El reticulocito es la célula roja que antecede en maduración al eritrocito, es el resultado de la pérdida del núcleo que sufre el eritroblasto ortocromático. 

Su tamaño varía de 10 - 15 micras de diámetro.

https://es.wikipedia.org/wiki/Reticulocito

Eritroblastos ortocromáticos, normoblastos o eritroblastos acidófilos


Se caracterizan por su núcleo picnótico* violeta negro intenso con abundante citoplasma eosinófilo. 


Junto con los eritroblastos policromatófilos, representan el 90% de las células eritroides.

*Cromatina muy condensada


Manual del Hemograma - Monica

Eritroblastos policromatófilos


Cuentan con un núcleo más pequeño y más condensado que el eritroblasto basófilo. 

La cromatina se agrega en motas de 1 μ de tono azul violeta, y se observa un halo perinuclear rosa pálido. 

El citoplasma es abundante y de color azulado opaco.


Manual del Hemograma - Monica Duarte

Eritroblastos basófilos

Proeritroblastos

viernes, 14 de abril de 2017

Eosinofilos en Moco Nasal

Preparación:

Realizar dos placas de secreción nasal con aplicadores; dejar secar al aire; no es necesario fijar.

Almacenamiento: A temperatura ambiente: 24 horas. Refrigeradas: 1 semana.

Contraindicaciones: Fijar con soluciones para citologías

Muestra: Secreción nasal en portaobjetos

Método: Tinción de Wright/Microscopía

Procedimiento:
  • Identifique el lado de la laminilla que contiene la muestra 
  • Tiña las laminillas según la técnica de Wrigth 
  • Deje secar las laminillas al aire 
  • Realice una lectura a 100 X a cada laminilla, estimando la cantidad de leucocitos presentes: 

Escasos: 1 a 5 por campo, Moderados: 6 a 20 por campo, Abundantes: más de 20 por campo 

Realice un conteo diferencial (polimorfonucleares, mononucleares y eosinofilos) en 100 células 

Recorra la cinta adhesiva por encima del portaobjetos 

Rango de referencia 0-1%

A menudo los eosinófilos están aumentados en la sangre y en el esputo de pacientes con asma, usualmente en relación con la severidad del proceso. 

El porcentaje de eosinófilos en esputo no hace el diagnóstico de asma, pero niveles mayores del 80% (en relación con la proporción de neutrófilos) son muy sugestivos de asma o de bronquitis crónica con dificultad respiratoria. 

Esto es evidencia de una correlación inversa entre el número de eosinófilos en la circulación y/o esputo y la función pulmonar.

jueves, 13 de abril de 2017

Escatergrama


Principal escatergrama de la serie blanca. 

En base a ella se generan las principales alertas relacionadas con la presencia de poblaciones anormales en la diferencial, como son: bandas, granulocitos inmaduros, blastos, var linfocitos, etc.










Atlas de Hematología Abbott Diagnósticos.