El método de flotación en parasitología es una técnica coproparasitoscópica de concentración basada en la diferencia de densidades. Se utiliza para separar huevos de helmintos, quistes y ooquistes de parásitos fecales, haciéndolos flotar hacia la superficie de una solución de alta densidad para su posterior análisis microscópico. [1, 2, 3, 4, 5, 6]
Fundamento Físico
Principio: Se mezcla la muestra fecal con una solución de mayor densidad (gravedad específica entre 1.18 y 1.30 g/cm³).
Densidades: Las estructuras parasitarias (más ligeras) flotan y ascienden, mientras que los restos fecales pesados y residuos se sedimentan en el fondo.[1, 2, 3, 4, 5]
Soluciones de Flotación Más Utilizadas
Solución de Willis (Cloruro de Sodio / Sal saturada): Densidad de 1.18. Ideal para huevos de nematodos y protozoarios.
Solución de Sheather (Azúcar / Sacarosa): Densidad de 1.20 a 1.27. Excelente para ooquistes frágiles (Cryptosporidium, Cystoisospora).
Solución de Faust (Sulfato de Zinc al 33.3%): Densidad de 1.18. Muy recomendada para recuperar quistes de protozoarios como Giardia.[1, 2, 3, 4, 5]
Procedimiento Paso a Paso (Técnica Pasiva o Simple)
Homogeneización: Se mezclan aproximadamente 2 a 3 gramos de heces con la solución de flotación elegida en un vaso o mortero.[1, 2]
Filtrado: Se pasa la mezcla por una gasa, colador o malla para eliminar los restos sólidos gruesos. [1, 2]
Llenado del tubo: Se vierte el líquido filtrado en un tubo de ensayo o tubo de centrífuga hasta el borde, creando un menisco convexo (una pequeña cúpula). [1, 2]
Captura: Se coloca un cubreobjetos de vidrio directamente sobre el menisco, asegurando que haga contacto con el líquido. [1, 2]
Lectura: Se retira el cubreobjetos tomándolo verticalmente, se coloca sobre un portaobjetos y se observa al microscopio con objetivos de 10X y 40X. [1, 2]
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