PRIMERA PARTE
SEGUNDA PARTE
Este Blog se realiza con la finalidad de apoyar a los profesionales que laboran en laboratorios clínicos y bancos de sangre
lunes, 22 de mayo de 2017
sábado, 20 de mayo de 2017
Agar sangre
Streptococcus en Agar Sangre
El género Streptococcus en Agar Sangre se cultiva a 35-37 °C (generalmente con 5 % de CO₂). Tras 18-24 horas, forman colonias pequeñas (de 1 a 2 mm), blanco-grisáceas, lisas, brillantes y translúcidas. Su característica principal es el patrón de hemólisis (lisis de glóbulos rojos): [1, 2, 3, 4, 5, 6]
Patrones de Hemólisis
Beta (β) hemólisis: Lisis completa. Se observa un halo claro, transparente y translúcido alrededor de las colonias. Ejemplos: Streptococcus pyogenes (Grupo A) y Streptococcus agalactiae (Grupo B). [1, 2, 3, 4, 5]
Alfa (α) hemólisis: Lisis parcial o incompleta. Se observa una coloración verdosa o marrón alrededor de la colonia debido a la reducción de la hemoglobina a metahemoglobina. Ejemplos: Streptococcus pneumoniae (Neumococo) y el grupo Streptococcus viridans. [1, 2, 3, 4, 5]
Gamma (γ) hemólisis: Sin hemólisis (no hay lisis ni cambio de color en el medio).
También se les llama no hemolíticos. Ejemplos: Streptococcus bovis o algunas cepas de Enterococcus (anteriormente clasificados aquí). [1]
Características Generales de Identificación
Tinción de Gram: Cocos Gram-positivos (violeta/morado) dispuestos en parejas (diplococos) o cadenas.
Prueba de Catalasa: Negativa (no producen burbujas al agregar peróxido de hidrógeno), lo que permite diferenciarlos fácilmente de los Staphylococcus, que son catalasa positivos.
viernes, 19 de mayo de 2017
domingo, 14 de mayo de 2017
sábado, 13 de mayo de 2017
Muestra de orina
Instrucciones para el paciente
Para paciente masculino:
Para paciente femenino:
• Lave sus manos con agua y jabón antes de obtener la muestra
• Separe sus labios
• Limpie sus genitales externos, de adelante hacia atrás, con tres toallas húmedas
• Seque con una toalla seca
• Deje salir un primer chorro a la taza del baño
• Deposite la siguiente porción en el frasco
• Elimine el resto en la taza del baño
• Tape el frasco evitando tocar el interior y entregarlo en el laboratorio lo antes posible
Para paciente masculino:
• Lave sus manos con agua y jabón antes de obtener la muestra
• Retraiga la piel del pene y lave la salida de la uretra con una toalla mojada (con pura agua)
• Limpie y seque con una toalla seca
• Deje salir un primer chorro a la taza del baño
• Deposite la siguiente porción en el frasco
• Elimine el resto en la taza del baño
• Tape el frasco evitando tocar el interior y entregarlo en el laboratorio lo antes posible
Para paciente femenino:
• Lave sus manos con agua y jabón antes de obtener la muestra
• Separe sus labios
• Limpie sus genitales externos, de adelante hacia atrás, con tres toallas húmedas
• Seque con una toalla seca
• Deje salir un primer chorro a la taza del baño
• Deposite la siguiente porción en el frasco
• Elimine el resto en la taza del baño
• Tape el frasco evitando tocar el interior y entregarlo en el laboratorio lo antes posible
Guía práctica
para la estandarización del procesamiento y examen de las muestras de orina.Por: M. en C. Vicente de Mária
y Campos Otegui. BIO-RAD.
Sistema Kova
Sistema Kova para estandarización de la cuenta microscópica de partículas en el sedimento urinario.
Es un equipo de material plástico desechable y estandarizado para controlar el volumen en el tubo, resuspender el sedimento en un volumen fijo y contar las partículas microscópicas en una cámara de cuenta estandarizada.
Guía práctica para la estandarización del procesamiento y examen de las muestras de orina.Por: M. en C. Vicente de Mária y Campos Otegui. BIO-RAD.
domingo, 7 de mayo de 2017
Tira reactiva
La tira reactiva utilizada para la determinación del pH y densidad y la investigación de elementos químicos en el examen de orina de rutina es constituida por un soporte plástico conteniendo áreas impregnadas con reactivos químicos.
Se produce una reacción de color cuando las área de química seca entran en contacto con la orina.
miércoles, 3 de mayo de 2017
martes, 2 de mayo de 2017
Prueba de Coombs
La prueba de Coombs sirve para detectar la existencia de anticuerpos frente a algún antígeno eritrocitario mediante la adición de suero antiglobulina humana o anticomplemento.
La prueba de Coombs directa detecta anticuerpos unidos a los hematíes del paciente (sensibilización en el propio organismo), y es positiva en anemias hemolíticas autoinmunes, anemias hemolíticas inducidas por fármacos, hematíes fetales en la enfermedad hemolítica del recién nacido o hematíes transfundidos en reacciones transfusionales de naturaleza inmune.
Procedimiento de la Prueba antiglobulina directa
Se emplea para demostrar la absorción “in vivo” de IgG y/o fracciones del complemento en la superficie de los glóbulos rojos.
1) Preparar una suspensión de glóbulos rojos a probar en PBS al 3%.
2) En un tubo de hemólisis colocar 1 gota de esta suspensión.
3) Lavar los glóbulos 3 veces con PBS. Asegurarse de remover la mayor cantidad posible de solución salina al final de cada lavado, de manera de obtener un botón celular “seco”. Descartar completamente el sobrenadante luego del último lavado.
4) Agregar 2 gotas de Suero Anti-humano (poliespecífico) al botón de células.
Mezclar perfectamente y centrifugar durante 15 segundos a 1.000 g.
5) Agitar suavemente el tubo a fin de deshacer el botón celular y observar macroscópicamente. La observación puede facilitarse si se emplea una fuente de luz difusa.
Tener en cuenta que agitaciones demasiado vigorosas pueden dar lugar a lecturas negativas de un aglutinado débil (falso negativo).
6) Los resultados negativos deben confirmarse por adición de glóbulos rojos sensibilizados con IgG débiles (Control de Coombs).
Coombs indirecta
La prueba de Coombs indirecta detecta anticuerpos libres en el suero del paciente (se provoca la sensibilización in vitro de hematíes y posteriormente se añade la antiglobulina).
Estos anticuerpos pueden surgir como consecuencia de la transfusión de sangre no compatible para el antígeno Rh (anticuerpos anti-D) u otros antígenos eritrocitarios, o cuando existe comunicación hemática materno-fetal durante la gestación o el parto cuando la madre es Rh — y el feto Rh+.
Procedimiento de la prueba antiglobulina indirecta (en solución fisiológica de baja fuerza iónica).
El empleo de esta solución permite reducir el tiempo de incubación a 15 minutos.
Los glóbulos rojos deben lavarse 2 veces con PBS y una vez con LISS.
Finalmente preparar con esta solución una suspensión de glóbulos rojos al 3%.
1) Colocar en un tubo de hemólisis 1 gota de suero a probar.
2) Agregar 1 gota de glóbulos rojos a probar al 3% en LISS.
3) Mezclar e incubar a 37°C durante 15 minutos en baño de agua.
4) Lavar los glóbulos 3 veces con PBS. Asegurarse de remover la mayor cantidad posible de solución salina al final de cada lavado, de manera de obtener un botón celular “seco”. Descartar completamente el sobrenadante luego del último lavado.
5) Agregar 2 gotas de Suero Anti-humano (poliespecífico) al botón de células. Mezclar perfectamente y centrifugar durante 15 segundos a 1.000 g.
6) Agitar suavemente el tubo a fin de deshacer el botón celular y observar macroscópicamente. La observación puede si se emplea una fuente de luz difusa.
Tener en cuenta que agitaciones demasiado vigorosas pueden dar lugar a lecturas negativas de un aglutinado débil (falso negativo).
7) Los resultados negativos deben confirmarse por adición de glóbulos rojos sensibilizados con IgG débiles (Control de Coombs).
Interpretación de los resultados
La observación de aglutinación (con cualquiera de las técnicas empleadas) en presencia del Suero Anti-humano (poliespecífico) indica la presencia de IgG o componentes del complemento en la membrana del glóbulo rojo; la reacción es positiva.
Si no se observa aglutinación, la reacción es negativa.
*Buffer fosfato (PBS) pH 7,0 ± 0,2.
**Solución fisiológica de baja fuerza iónica (LISS).
La Clínica y el Laboratorio - Bacells, 22a edición
Inserto Wienner Lab.
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